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核内輸送受容体はRNA結合タンパク質FUSの液-液相分離を抑制する

吉澤 拓也
(米国Texas大学Southwestern Medical Center,Department of Pharmacology)
email:吉澤拓也
DOI: 10.7875/first.author.2018.055

Nuclear import receptor inhibits phase separation of FUS through binding to multiple sites.
Takuya Yoshizawa, Rustam Ali, Jenny Jiou, Ho Yee Joyce Fung, Kathleen A. Burke, Seung Joong Kim, Yuan Lin, William B. Peeples, Daniel Saltzberg, Michael Soniat, Jordan M. Baumhardt, Rudolf Oldenbourg, Andrej Sali, Nicolas L. Fawzi, Michael K. Rosen, Yuh Min Chook
Cell, 173, 693-705.e22 (2018)




この論文に出現する遺伝子・タンパク質のUniprot ID

核内輸送受容体, FUS(P35637), Kapβ2(Q92973), 核内輸送受容体Kapβ2(Q92973), TEVプロテアーゼ, Ran(P62826), TAF15(Q92804), EWSR1(Q01844), Karyopherinβ, Importinα, Importinβ, Kap121(P32337), Crm1(O14980)
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要 約


 液-液相分離は特定の生体高分子が膜のない集合体を形成するものであるが,その形成の過程および消失については不明な点が多く残されている.RNA結合タンパク質である
FUS
は,やわらかな凝集ともいえる液-液相分離をひき起こすタンパク質として,近年,さかんに研究が進められている.この研究において,筆者らは,
FUS
の液-液相分離が
核内輸送受容体
である
Kapβ2
により抑制されることを明らかにした.
Kapβ2
のこの機能は,
FUS
のもつ
Kapβ2
に特異的な核移行シグナル配列との結合に依存するものであった.NMR法による相互作用の解析の結果,
FUS
はこの核移行シグナル配列のほか幅広い領域において
Kapβ2
と弱く相互作用することが明らかにされ,それらの領域は液-液相分離の形成を促進する領域と一致した.以上の結果から,
Kapβ2
FUS
のもつ
Kapβ2
に特異的な核移行シグナル配列と強固に結合しながら,
FUS
のさまざまな領域と弱く相互作用することにより液-液相分離を抑制することが明らかにされた.

はじめに


 
FUS
は,転写,RNAプロセシング,DNA修復などに関与するRNA結合タンパク質である.
FUS
はさまざまな疾患にかかわることが知られており,とくに,重篤な神経変性疾患である筋萎縮性側索硬化症の家族性の患者において,核移行シグナル配列に多くの変異がみつかったことが注目をあつめた1).この核移行シグナル配列は
核内輸送受容体
Kapβ2
により認識され,
FUS
の核への移行をつかさどる.
Kapβ2
による核への輸送により,
FUS
はおもに核に局在するが,その一方で,細胞質の膜をもたない構造体であるRNA顆粒の構成タンパク質になることも知られている.RNA顆粒における
FUS
の役割については謎が残されているが,RNA顆粒を形成するような凝集性のあるタンパク質が細胞質に過剰に蓄積することは害であり,適切に制御されることが重要であると考えられている.
 
FUS
は526残基からなるマルチドメインタンパク質である.N末端側にはGlu,Gly,Ser,Tyrに富むLCドメインがある.LCドメインは単独でも液-液相分離をひき起こすこと,アミロイド様のポリマーによるヒドロゲルを形成することが報告されている2,3)(文献2)新着論文レビュー でも掲載,文献3)新着論文レビュー でも掲載).LCドメインのほかにも,特定のアミノ酸残基に富む領域としてArg-Gly-Gly配列がくり返し現われるRGG領域が3つ存在する(RGG1領域~RGG3領域).それぞれのRGG領域のあいだにはRNA結合モチーフおよびジンクフィンガーモチーフが存在する.RGG領域を含む
FUS
のほうがより低濃度で液-液相分離を形成することから,LCドメイン以外の領域も液-液相分離に寄与すると考えられている.C末端側の26残基が
Kapβ2
により特異的に認識される核移行シグナル配列である4)図1).筋萎縮性側索硬化症の原因となる変異はこの核移行シグナル配列において多く報告されているが,液-液相分離との直接的なかかわりはないと考えられている.これまで,
FUS
の液-液相分離における
Kapβ2
の影響については明らかにされていなかった.この研究において,筆者らは,
FUS
の液-液相分離における
Kapβ2
の役割に着目した.あわせて,さまざまな手法により
Kapβ2
FUS
との相互作用について解析した.

図1 FUSのドメイン構造
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1.
核内輸送受容体
Kapβ2
による
FUS
の液-液相分離の抑制


 
FUS
は,N末端に可溶性のタグタンパク質であるMBPを付加した融合タンパク質として大腸菌により発現させ,精製したものを用いた.MBPと
FUS
とのあいだには
TEVプロテアーゼ
により切断される配列を挿入した.
TEVプロテアーゼ
により
FUS
からMBPを切り離すと,透明であった溶液はたちまち白濁した.その溶液を共焦点顕微鏡により観察すると,液-液相分離による
FUS
の粒滴が形成されていた.一方,
TEVプロテアーゼ
をくわえるまえに等量の
Kapβ2
をくわえておくと,
TEVプロテアーゼ
により処理しても
FUS
の液-液相分離は起こらず,
Kapβ2
により
FUS
の液-液相分離は阻害された(図2).ゲルろ過カラムにより解析したところ,
Kapβ2
FUS
は1対1の複合体を形成し安定であった.
Kapβ2
による液-液相分離の抑制は
FUS
の粒滴が形成されたあとでも効果を示した.いったん液-液相分離が起こったあとでも,
Kapβ2
の添加により液-液相分離は消失した.

図2 Kapβ2はFUSの液-液相分離を抑制する
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Kapβ2
の存在下であっても,
Ran
あるいはM9Mペプチドインヒビターをくわえると溶液は白濁した.すなわち,
Kapβ2
による液-液相分離の抑制はM9Mペプチドインヒビターあるいは
Ran
により阻害された.M9Mペプチドインヒビターおよび
Ran
はどちらも
Kapβ2
と結合した核移行シグナル配列を解離させる機能をもつ.したがって,
Kapβ2
による液-液相分離の抑制には核移行シグナル配列との結合が重要であることが明らかにされた.
 
Kapβ2
による
FUS
の液-液相分離の抑制については,同様の結果が,ほか3つの研究グループから同じ号のCell誌に発表された5-7).なかでも,ひとつの研究グループは,
Kapβ2
FUS
のみならず,
TAF15
EWSR1
といったこの特異的な核移行シグナル配列をもつほかの凝集性タンパク質についても同様の役割をはたすことを示した5)

2.
FUS
の液-液相分離の抑制は
核内輸送受容体
に共通する機能である


 
Kapβ2
は核輸送受容体
Karyopherinβ
ファミリーの一員である.ヒトにおいては,主要な核への輸送を担う
Importinα
-Importinβ複合体をはじめ,約20種類のファミリータンパク質が存在する.液-液相分離の抑制が
Kapβ2
に特有の機能であるのか,ほかの
Karyopherinβ
ファミリーにはないのか解析した.その結果,
Importinα
-Importinβ複合体は野生型の
FUS
の液-液相分離に対する抑制能をもたなかったが,出芽酵母に由来する
Kap121
FUS
の液-液相分離を部分的に抑制した.液-液相分離の抑制には核移行シグナル配列との相互作用が重要であるため,
FUS
の核移行シグナル配列をほかの核移行シグナル配列と置き換えたキメラタンパク質を作製し解析した.
FUS
の核移行シグナル配列を
Importinα
-Importinβ複合体により認識される古典的な核移行シグナル配列と置き換えたところ,
Importinα
-Importinβ複合体により
FUS
の液-液相分離は抑制された.同様に,
FUS
の核移行シグナル配列を
Kap121
により認識される核移行シグナルと置き換えると,
Kap121
により
FUS
の液-液相分離は強く抑制された.いずれの液-液相分離も
Ran
により阻害されたことから,それぞれの核移行シグナル配列との相互作用に強く依存するものであることが明らかにされた.一方で,核外輸送受容体である
Crm1
について,
FUS
の核移行シグナル配列を
Crm1
により認識される核外移行シグナル配列と置き換えても,
Crm1
により
FUS
の液-液相分離は抑制されなかった.これらの
Karyopherinβ
ファミリーは同様にαヘリックスが積み重なったHEATリピート構造をとる.液-液相分離の抑制は
核内輸送受容体
に特有のものであることが示唆された.

3.
Kapβ2
FUS
のさまざまな領域と相互作用する


 MBP-FUS融合タンパク質および
FUS
-Kapβ2複合体をX線小角散乱法により解析した結果,
FUS
Kapβ2
との結合にともない構造がよりコンパクトになることが示された.
Kapβ2
は核移行シグナル配列以外の領域とどのように相互作用するのかを明らかにするため,X線結晶構造解析を試みた.
FUS
-Kapβ2複合体の結晶化および構造解析の結果,
Kapβ2
については全長にわたりモデルが構築されたものの,
FUS
においてモデルが構築されたのは核移行シグナル配列の領域のみであった.つまり,
FUS
の核移行シグナル配列以外の領域は結晶において特定の構造をもたないことが示唆された.
Kapβ2
FUS
の核移行シグナル配列以外の領域との相互作用は弱く多岐にわたるものであると推察し,NMR法により相互作用を解析した.過去にN末端側の領域が決定されていたが8).その領域に対し,
Kapβ2
をくわえていくとTyrを含む3つの領域においてシグナルの減衰がみられた.そのうちのひとつの配列は,近年,LCドメインによるフィラメント構造のコアになる領域であることが明らかにされている3,9).LCドメイン以外の領域についても,NMR法による相互作用を解析した結果,RGG1領域を除くすべての領域との弱い相互作用が検出された.

4.
FUS
の液-液相分離は特定のアミノ酸残基に富む領域により促進される


 NMR法により決定された相互作用領域が
FUS
の液-液相分離におよぼす影響について調べた.
FUS
の液-液相分離には温度依存性があることから,溶液が白濁しはじめる温度を解析した.野生型の
FUS
と比べ,核移行シグナル配列のみを欠失させた
FUS
は白濁しはじめる温度はほとんど変わらなかったが,RGG3領域,あるいは,RGG2領域およびRGG3領域を欠失させた
FUS
は溶液が白濁しはじめる温度がいちじるしく低下した.LCドメインの5つのTyrをAlaに変異させた
FUS
,および,RGG2領域およびRGG3領域のすべてのArgをLysに変異させた
FUS
においても,溶液が白濁しはじめる温度が低下した.RGG領域のArgはメチル化をうけることが報告されている.同時に発表されたほかの2つの研究グループの論文は,Argのメチル化により液-液相分離は抑制される結果を示している6,7).また,LCドメインのTyrとRGG領域のArgの相互作用により液-液相分離が促進されることも報告している7).以上のことから,
FUS
の液-液相分離を促進する領域は,
Kapβ2
と相互作用する領域とオーバーラップすることが明らかにされた.

おわりに


 これまで,
核内輸送受容体
については核内タンパク質を核へと輸送する役割のみが知られていた.しかし,この研究において,
核内輸送受容体
は単なる輸送タンパク質にとどまらず,凝集性のある核内タンパク質とダイナミックに相互作用する分子シャペロンであることが示された.やわらかな凝集である液-液相分離とその制御は,近年,もっともホットなトピックのひとつである.この研究により新たな知見を得られたことをうれしく思う.

文 献



  1. Vance, C., Rogelj, B., Hortobagyi, T. et al.: Mutations in FUS, an RNA processing protein, cause familial amyotrophic lateral sclerosis type 6. Science, 323, 1208-1211 (2009)[PubMed]

  2. Kato, M., Han, T. W., Xie, S. et al.: Cell-free formation of RNA granules: low complexity sequence domains form dynamic fibers within hydrogels. Cell, 149, 753-767 (2012)[PubMed] [新着論文レビュー]

  3. Murray, D. T., Kato, M., Lin, Y. et al.: Structure of FUS protein fibrils and its relevance to self-assembly and phase separation of low-complexity domains. Cell, 171, 615-627 (2017)[PubMed] [新着論文レビュー]

  4. Zhang, Z. C. & Chook, Y. M.: Structural and energetic basis of ALS-causing mutations in the atypical proline-tyrosine nuclear localization signal of the Fused in Sarcoma protein (FUS). Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 109, 12017-12021 (2012)[PubMed]

  5. Guo, L., Kim, H. J., Wang, H. et al.: Nuclear-import receptors reverse aberrant phase transitions of RNA-binding proteins with prion-like domains. Cell, 173, 677-692 (2018)[PubMed]

  6. Hofweber, M., Hutten, S., Bourgeois, B. et al.: Phase separation of FUS is suppressed by its nuclear import receptor and arginine methylation. Cell, 173, 706-719 (2018)[PubMed]

  7. Qamar, S., Wang, G., Randle, S. J. et al.: FUS phase separation is modulated by a molecular chaperone and methylation of arginine cation-π interactions. Cell, 173, 720-734 (2018)[PubMed]

  8. Bruke, K. A., Janke, A. M., Rhine, C. L. et al.: Residue-by-residue view of in vitro FUS granules that bind the C-terminal domain of RNA polymerase II. Mol. Cell, 60, 231-241 (2015)[PubMed]

  9. Luo, F., Gui, X., Zhou, H. et al.: Atomic structures of FUS LC domain segments reveal bases for reversible amyloid fibril formation. Nat. Struct. Mol. Biol., 25, 341-346 (2018)[PubMed]


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著者プロフィール


吉澤 拓也(Takuya Yoshizawa)
略歴:横浜市立大学大学院生命ナノシステム科学研究科にて博士号取得,米国Texas大学Southwestern Medical Center研究員を経て,立命館大学生命科学部 助教.
研究テーマ:核輸送受容体の機能および構造.

© 2018 吉澤 拓也 Licensed under CC 表示 2.1 日本